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M2 대식세포의 실시간 모니터링은 암 진단 및 치료에 필수적이나, 기존 방법은 정밀 추적에 한계가 있습니다. 본 기술은 신규 벤조[de]아이소퀴놀린 유도체 기반의 M2 대식세포 선택적 형광 프로브를 개발하여 이 문제를 해결합니다. 이 프로브는 M2 대식세포에 특이적으로 발현되는 지방산 수송 단백질(CD36, SLC27A3 등)에 선택적으로 흡수되어, 대식세포의 표현형 변화를 정밀하게 모니터링할 수 있습니다. 이는 종양 및 염증 관련 질병의 효과적인 진단과 치료에 기여하며, 정밀 의학 분야에 혁신적인 솔루션을 제공할 것으로 기대됩니다.
| 기술 분야 | 생체 진단 기술 |
| 판매 유형 |
| 자체 판매 |
| 판매 상태 | 판매 중 |
| 기술명 | |
| M2 대식세포 표지용 형광 프로브 및 이를 이용한 m2 대식세포 모니터링 시스템 | |
| 기관명 | |
| 기초과학연구원, 포항공과대학교 산학협력단 | |
| 대표 연구자 | 공동연구자 |
| 장영태 | |
| 출원번호 | 등록번호 |
| 1020220179191 | - |
| 권리구분 | 출원일 |
| 특허 | 2022.12.20 |
| 중요 키워드 | |
대식세포 모니터링면역 항암생체 시료 분석바이오마커 개발벤조아이소퀴놀린시각화 시스템 | |
대식세포는 우리 몸의 면역체계와 항상성 유지를 담당하며, 환경에 따라 염증 반응을 일으키는 M1 대식세포와 항염증 활성을 보이는 M2 대식세포로 분극화됩니다.
특히 종양 관련 대식세포(TAM)와 같은 M2 대식세포는 종양의 진행을 돕는 역할을 하여 암 치료의 중요한 표적이 됩니다.
기존에는 항체를 이용해 대식세포 아형을 추적했지만, 대식세포의 동적 변화를 실시간으로 측정하는 데 한계가 있었습니다.
새로운 암 치료법 개발을 위해서는 M1과 M2 대식세포 사이의 표현형 변화를 정확하게 모니터링하는 것이 필수적입니다.
기존 항체 기반 방식의 한계를 극복하고, 실시간으로 대식세포의 동적 변화를 추적할 수 있는 새로운 진단 및 모니터링 기술이 요구됩니다.
본 기술은 M1과 M2 대식세포 간의 대사 차이에 주목하여 개발되었습니다. M1은 주로 포도당을, M2는 지방산을 에너지원으로 사용합니다.
개발된 형광 프로브는 지방산을 모방한 구조를 가지고 있어, 지방산 수송 단백질(CD36, SLC27A3 등)이 많이 발현되는 M2 대식세포에 선택적으로 흡수됩니다.
이러한 선택적 흡수 메커니즘을 통해, 형광 프로브는 M2 대식세포만을 특이적으로 표지하여 시각화할 수 있습니다.
신규한 벤조[de]아이소퀴놀린 유도체 화합물을 개발하여 M2 대식세포 표지용 형광 프로브로 사용합니다.
이 형광 프로브를 포함하는 시각화용 조성물 및 키트를 제공하여, 생체 시료 내 M2 대식세포의 위치와 양 등의 정보를 얻습니다.
형광 프로브와 지방산 수송 단백질을 이용하여 M2 대식세포 모니터링 시스템을 구축합니다.
화합물은 특허에 명시된 반응식에 따라 합성되며, 다양한 알킬 사슬 길이를 가진 유도체(총 80종)를 제조하여 최적의 후보 물질을 선별합니다.

M2 대식세포에 대한 매우 뛰어난 선택성을 보입니다. 특히 화합물 CDg18은 M2/M0 형광 강도 비율 1.57, M2/M1 비율 1.65로 가장 우수한 성능을 나타냈습니다.
대식세포의 표현형 변화를 실시간으로 정교하게 모니터링할 수 있어, 질병의 진행 과정을 동적으로 추적할 수 있습니다.
종양 미세환경에 대한 정확한 정보를 제공하여, 관련 질병의 진단 및 치료에 유용하게 응용될 수 있습니다.
본 연구의 실험은 크게 세 가지 목적으로 수행되었습니다. 첫째, 합성된 벤조[de]아이소퀴놀린 유도체 화합물들의 M2 대식세포에 대한 선택성을 분석합니다. 둘째, 가장 우수한 선택성을 보인 화합물(CDg18)의 세포 내 흡수 메커니즘을 규명합니다. 셋째, 이 형광 프로브가 M2에서 M1으로의 표현형 변화(재분극)를 실시간으로 시각화할 수 있는지 검증합니다.
형광 강도 히트맵 분석: 합성된 80종의 화합물을 각각 M0, M1, M2 대식세포에 처리한 후 형광 이미지를 획득하여 평균 형광 강도(MFI)를 비교, 분석했습니다.
M2 대식세포 선택성 메커니즘 분석: M0, M1, M2 세포에서 7종의 지방산 수송 단백질 발현 수준을 비교했습니다. 이후, 특정 수송체 억제제(SSO, grassofermata)를 처리하여 CDg18 흡수에 주요한 역할을 하는 수송체를 확인했습니다.
표현형 변화 모니터링: M2 대식세포에 재분극 유도 물질(HS-1793)을 농도별로 처리한 후, M2 표지용 프로브(CDg18, 녹색)와 M1 표지용 프로브(CDr17, 적색)의 형광 강도 변화를 측정하여 대식세포의 동적 움직임을 추적했습니다.
실험 결과, 화합물은 탄소 사슬 길이에 따라 다른 활성을 보였으며, 그중 화합물 CDg18이 M2 대식세포에 가장 현저한 선택성을 나타냈습니다. 이 선택성은 지방산 수송 단백질 SLC27A3이 M2 대식세포에서 CDg18 흡수에 주요 역할을 하는 메커니즘에 의한 것임이 밝혀졌습니다. 또한, 재분극 유도 실험에서 HS-1793 농도가 증가함에 따라 CDg18의 형광 강도는 감소하고 CDr17의 강도는 증가하여, 대식세포의 동적 움직임을 성공적으로 추적할 수 있음을 확인했습니다.
n 값 | M2/M0 (m=6) | M2/M0 (m=7) | M2/M0 (m=8) | M2/M0 (m=9) | M2/M0 (m=10) | M2/M0 (m=11) | M2/M0 (m=12) | M2/M0 (m=13) | M2/M0 (m=15) | M2/M0 (m=17) | M2/M1 (m=6) | M2/M1 (m=7) | M2/M1 (m=8) | M2/M1 (m=9) | M2/M1 (m=10) | M2/M1 (m=11) | M2/M1 (m=12) | M2/M1 (m=13) | M2/M1 (m=15) | M2/M1 (m=17) |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
n=3 | 0.87 | 1.0 | 0.98 | 1.08 | 0.87 | 0.73 | 0.72 | 0.69 | 0.67 | 0.78 | 0.98 | 1.0 | 1.03 | 1.47 | 0.94 | 0.99 | 0.78 | 0.81 | 0.83 | 0.92 |
n=4 | 1.1 | 1.14 | 1.31 | 1.19 | 0.79 | 0.81 | 0.74 | 0.61 | 0.78 | 0.8 | 0.96 | 0.85 | 1.07 | 1.01 | 0.87 | 0.87 | 0.79 | 0.71 | 0.87 | 0.93 |
n=5 | 1.23 | 1.22 | 1.05 | 0.84 | 0.74 | 0.73 | 0.58 | 0.46 | 0.63 | 0.79 | 1.12 | 1.12 | 0.99 | 0.84 | 0.85 | 0.81 | 0.66 | 0.6 | 0.83 | 0.9 |
n=6 | 1.36 | 1.24 | 1.31 | 0.92 | 0.85 | 0.62 | 0.5 | 0.42 | 0.69 | 0.83 | 1.16 | 1.12 | 1.17 | 0.95 | 1.02 | 0.73 | 0.6 | 0.63 | 0.85 | 0.94 |
n=7 | 1.09 | 1.16 | 1.3 | 1.3 | 0.83 | 0.79 | 0.74 | 0.72 | 0.86 | 1.01 | 1.07 | 1.18 | 1.43 | 1.45 | 1.09 | 0.97 | 0.87 | 0.8 | 0.97 | 1.04 |
n=9 | 1.15 | 1.1 | 1.57 | 1.48 | 1.38 | 1.23 | 1.09 | 1.04 | 1.09 | 1.09 | 1.16 | 1.13 | 1.65 | 1.67 | 1.47 | 1.3 | 0.94 | 1.07 | 1.14 | 1.11 |
n=10 | 1.49 | 1.2 | 1.54 | 1.97 | 1.57 | 1.14 | 1.11 | 1.02 | 1.03 | 1.06 | 1.52 | 1.23 | 1.59 | 1.76 | 1.69 | 1.17 | 1.09 | 1.13 | 1.07 | 1.06 |
n=11 | 1.15 | 1.05 | 1.29 | 1.45 | 1.16 | 1.31 | 1.1 | 1.18 | 1.05 | 1.06 | 1.21 | 1.19 | 1.31 | 1.29 | 1.21 | 1.31 | 1.07 | 1.17 | 1.07 | 1.1 |
M2 대식세포 진단: M2 대식세포를 선택적으로 시각화하는 영상 진단용 조성물 또는 키트로 개발할 수 있습니다.
치료 반응 모니터링: 암 치료 과정에서 종양 미세환경 내 대식세포의 표현형 변화를 모니터링하여 치료 효과를 판정하는 데 활용할 수 있습니다.
약물 전달 시스템: 형광 프로브를 독소루비신과 같은 항암제와 결합하여 M2 대식세포를 표적하는 약물 전달체로 응용할 수 있습니다.
신약 개발: M2 대식세포 관련 질병(각종 암, 염증 질환 등)의 치료제 개발을 위한 연구용 시약 및 스크리닝 도구로 사용될 수 있습니다.
정밀 의료 실현: 실시간으로 대식세포의 변화를 추적하여 환자 맞춤형 치료 전략 수립에 기여할 수 있습니다.
면역 항암 치료 효율 증대: 종양 미세환경 내 면역 반응을 회복시키는 새로운 치료법 개발의 중요한 단서를 제공할 수 있습니다.
진단 기술 발전: 기존 기술의 한계를 극복한 새로운 개념의 형광 프로브 기술로, 바이오 이미징 및 진단 시장에서 높은 기술적 가치를 가집니다.
M2 대식세포 표적 진단 기술에 대한 구체적인 시장 규모 데이터는 확인되지 않았으나, 관련 분야의 성장을 통해 잠재력을 유추할 수 있습니다. 종양 미세환경(TME)의 중요성이 부각되면서 이를 표적하는 진단 및 치료 기술 시장은 빠르게 성장할 것으로 예상됩니다.
TAM의 중요성 부각: M2 대식세포는 종양 미세환경의 핵심 요소로, 이를 모니터링하는 기술은 암 진단 및 치료에 필수적입니다.
정밀 의료 시장 성장: 고령화 사회와 맞춤형 치료 수요 증가로 암과 같은 난치성 질환의 조기 진단 기술 시장이 지속적으로 성장하고 있습니다.
형광 프로브의 잠재력: 실시간 동적 변화 측정이 가능한 형광 프로브는 기존 항체 기반 진단의 한계를 보완하며 새로운 시장 기회를 창출할 수 있습니다.

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[기술 요약] M2 대식세포의 실시간 모니터링은 암 진단 및 치료에 필수적이나, 기존 방법은 정밀 추적에 한계가 있습니다. 본 기술은 신규 벤조[de]아이소퀴놀린 유도체 기반의 M2 대식세포 선택적 형광 프로브를 개발하여 이 문제를 해결합니다. 이 프로브는 M2 대식세포에 특이적으로 발현되는 지방산 수송 단백질(CD36, SLC27A3 등)에 선택적으로 흡수되어, 대식세포의 표현형 변화를 정밀하게 모니터링할 수 있습니다. 이는 종양 및 염증 관련 질병의 효과적인 진단과 치료에 기여하며, 정밀 의학 분야에 혁신적인 솔루션을 제공할 것으로 기대됩니다.
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